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Proteins are used in routine laboratory procedures such as binding enzymes or coupling peptides to carrier proteins. These kits, mixture solutions, and collagen matrices fulfill a myriad of essential laboratory functions for developing relationships between proteins and other cellular components. The stimulating proteins offered have various amino acid arrangements and functions to fulfill any sample manipulation for testing purposes in any field.
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Description:
MG-132 is a potent, cell permeable and selective proteasome inhibitor (Ki = 4 nM).1 It inhibits NF-κB activation by preventing IκB degradation (IC50 = 3 μM). The peptide blocks degradation of short-lived proteins, which in turn induces HSP and ER chaperone expression, leading to thermotolerance (1 μM MG-132, 2 h.). It also stimulates neurite outgrowth in PC12 cells (20 nM optimal). The peptide has also been reported to increase the survival rate of mesenchymal stem cells following their transplantation. IC50’s for inhibition of Suc-LLVY-AMC and Z-LLL-AMC cleaving activities of proteasome were 0,85 and 0,1 μM respectively. The ubiquitin-proteasome system (UPS) and autophagy serve as two complementary, reciprocally regulated protein degradation systems, thus blockade of UPS by MG-132 activates autophagy.
Description:
The HIGHDEF® DAB Chromogen/Substrate Set can be used in conjunction with peroxidase-based immunostaining systems. Peroxidase from the antibody detection system reacts with hydrogen peroxide substrate to degrade it, which then reacts with DAB, precipitating it at positive sites and yielding a dark brown color.
Description:
PLA2 stimulatory bee venom peptide. Sequence is similar to Phospholipase A2 Activating Peptide (Prod. No. ALX-165-007). Activates PLA2 (5-fold at 10 µg/ml) in BC3H1 cells. For additional technical information see melittin (natural) (Prod. No. ALX-162-006).
Description:
Microcystins are a group of cyclic heptapeptide hepatotoxins produced by a number of cyanobacterial genera. The most notable of which, and namesake, is the widespread genus Microcystis. Structurally, all microcystins consist of the generalized structure cyclo(-D-Ala1-X2-D-MeAsp3-Y4-Adda5-D-Glu6-Mdha7-). X and Y are variable L-amino acids, D-MeAsp is D-erythro-β-methylaspartic acid and Mdha is N-methyldehydroalanine. Adda is the cyanobacteria unique C20 β-amino acid 3-amino-9-methoxy-2,6,8-trimethyl-10-phenyl-deca-4,6-dienoic acid. Substitutions of the variable L-amino acids at positions 2 and 4 give rise to at least 21 known primary microcystin analogs and alterations in the other constituent amino acids result in more than 90 reported mycrocystins to date.
Description:
Fluor de Lys® Substrate is a highly sensitive and convenient alternative to radiolabeled, acetylated histones or peptide/HPLC methods for the assay of histone deacetylases. The Fluor de Lys® Substrate, which comprises an acetylated lysine side chain, is incubated with a sample containing HDAC activity (nuclear or cellular extract, purified enzyme, bead-bound immunocomplex, etc.). Deacetylation of the substrate sensitizes the substrate so that, in a second step, treatment with the Fluor de Lys® Developer produces a fluorophore. Histone deacetylases from all known classes have been successfully assayed with the Fluor de Lys® Substrate. These include human HDACs 1, 2, 3 and 8 (class I), human HDACs 4 and 9 (class II) and the sirtuins yeast Sir2, human SIRT1 and human SIRT2 (class III; reaction must include the sirtuin substrate NAD+). The substrate is cell-permeable and serves as the basis for the HDAC Cellular Activity Assay Kit (Prod. No. BML-AK503). NOTE: Must be used in conjunction with Fluor de Lys® Developer (Prod. No. BML-KI105). Sufficient for 100-1000 assays of HDACs or sirtuins (50 µl reaction volume, 50-500 µM (substrate).
Description:
Cytokines for polarizing T cells into T regulatory cells. T regulatory cells (Tregs) are a subset of T cells that suppress immune function. They are characterized by the expression of CD4, CD25 and Foxp3 and are known to produce immunosuppressive cytokines TGF-β 1 and IL-10. Tregs can be cultured from naive CD4+ T cells by culturing them in the presence of IL-2 and TGF-β 1 with CD3 and CD28 stimulation. In some cases cells are also cultured with neutralizing antibodies to IL-4, IFNγ and IL-12 and/or retinoic acid.
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